鹿特定基因序列（Deer）核酸檢測試劑盒方法

組成及試劑配制:
1、鹿特定基因序列(Deer)核酸檢測試劑盒方法酶標板：一塊（96孔）
2、 標準品（凍干品）： 2瓶，請臨用前15分鐘內配制。每瓶以樣品稀釋液稀釋至0.5ml，蓋好后室溫靜置大約10分鐘，同時反復顛倒/搓動以助溶解，其濃度為200 U/L，然后做系列倍比稀釋（注：不要直接在板中進行倍比稀釋），分別配制成200 U/L，100 U/L，50 U/L，25 U/L，12.5 U/L，6.25 U/L，3.12 U/L，樣品稀釋液直接作為空白孔 0 U/L。如配制100 U/L標準品：取0.3ml （不要少于0.3ml ）200 U/L的上述標準品加入含有0.3ml樣品稀釋液的Eppendorf管中，混勻即可，其余濃度以此類推。
3、 樣品稀釋液：1×20ml。
4、 檢測稀釋液A：1×10ml。
5、 檢測稀釋液B：1×10ml。

需要自備的器材：
1．鹿特定基因序列(Deer)核酸檢測試劑盒方法儀器：分析天平、離心機、熒光 PCR 擴增儀、組織研磨器、-20 ℃冰箱、可調移液器（2 µL、20µL、200 µL、1000 µL）。
2．耗材：熒光 PCR 反應管、眼科剪、眼科鑷、生理鹽水、1.5 mL 經焦碳酸二乙酯（DEPC）水
處理的滅菌離心管、吸頭（10 µL、200 µL、1000 µL）、滅菌雙蒸水。
鹿特定基因序列(Deer)核酸檢測試劑盒方法具有下列特點：
1.即開即用，用戶只需要提供樣品 DNA 模板，操作簡單，定量準確快速。
2. 引物經過優化，特異性強。預期的 PCR 產物長度為 560 bp。
3. PCR mix 中含上樣染料，PCR 后可以直接上樣電泳。
4. 提供陽性對照，便于分析試驗結果。

以下是鹿特定基因序列(Deer)核酸檢測試劑盒方法的訂購信息：

組蛋白脫乙酰基酶11(HDAC11)檢測試劑盒(酶聯免疫吸附試驗法)　  *  規格：　48T/96T

組蛋白脫乙酰基酶2(HDAC2)檢測試劑盒(酶聯免疫吸附試驗法)　  *  規格：　48T/96T

組蛋白脫乙酰基酶2(HDAC2)檢測試劑盒(酶聯免疫吸附試驗法)　  *  規格：　48T/96T

組蛋白脫乙酰基酶3(HDAC3)檢測試劑盒(酶聯免疫吸附試驗法)　  *  規格：　48T/96T

組蛋白脫乙酰基酶4(HDAC4)檢測試劑盒(酶聯免疫吸附試驗法)　  *  規格：　48T/96T

組蛋白脫乙酰基酶4(HDAC4)檢測試劑盒(酶聯免疫吸附試驗法)　  *  規格：　48T/96T

巰基丙酮酸硫轉移酶(MPST)檢測試劑盒(酶聯免疫吸附試驗法)　  *  規格：　48T/96T

巰基丙酮酸硫轉移酶(MPST)檢測試劑盒(酶聯免疫吸附試驗法)　  *  規格：　48T/96T

緩激肽(BK)檢測試劑盒(酶聯免疫吸附試驗法)　  *  規格：　48T/96T

緩激肽(BK)檢測試劑盒(酶聯免疫吸附試驗法)　  *  規格：　48T/96T

緩激肽(BK)檢測試劑盒(酶聯免疫吸附試驗法)　  *  規格：　48T/96T

緩激肽(BK)檢測試劑盒(酶聯免疫吸附試驗法)　  *  規格：　48T/96T
鹿特定基因序列(Deer)核酸檢測試劑盒方法重組人 SIRPG / SIRP gamma / CD172g 蛋白 (His 標簽)SIRPG ProteinHuman

重組人 CD73 / NT5E 蛋白 (His 標簽)NT5E ProteinHuman

重組人 CEACAM3 / CD66d 蛋白 (His 標簽)CEACAM3 ProteinHuman

重組人 HMGB1 / HMG1 蛋白 (His 標簽)HMGB1 ProteinHuman

重組人 CCL17 / TARC / SCYA17 蛋白CCL17 ProteinHuman

重組人 TLK1 / PKU-beta 蛋白 (His & GST 標簽)TLK1 ProteinHuman

重組人 ERN1 / IRE1 蛋白 (aa 465-977, His & GST 標簽)ERN1 ProteinHuman

重組人 FCGRT & B2M Heterodimer 蛋白FCGRT & B2M ProteinHuman

重組人 PDE2A / CGS-PDE 蛋白 (aa 215-900, His 標簽)PDE2A ProteinHuman

重組人 HTRA2 / OMI 蛋白 (His 標簽)HTRA2 ProteinHuman

重組人 Cystatin A / CSTA 蛋白 (His 標簽)CSTA ProteinHuman
反應五要素：
鹿特定基因序列(Deer)核酸檢測試劑盒方法參加PCR反應的物質主要有五種即引物、酶、dNTP、模板和Mg2+
引物：引物是PCR特異性反應的關鍵，PCR 產物的特異性取決于引物與模板DNA互補的程度。理論上，只要知道任何一段模板DNA序列， 就能按其設計互補的寡核苷酸鏈做引物，利用PCR就可將模板DNA在體外大量擴增。設計引物應遵循以下原則：
①引物長度： 15-30bp，常用為20bp左右。
②引物擴增跨度： 以200-500bp為宜，特定條件下可擴增長至10kb的片段。
③引物堿基：G+C含量以40-60%為宜，G+C太少擴增效果不佳，G+C過多易出現非特異條帶。ATGC隨機分布，避免5個以上的嘌呤或嘧啶核苷酸的成串排列。
④避免引物內部出現二級結構，避免兩條引物間互補，特別是3'端的互補，否則會形成引物二聚體，產生非特異的擴增條帶。
⑤引物3'端的堿基，特別是末及倒數第二個堿基，應嚴格要求配對，以避免因末端堿基不配對而導致PCR失敗。
⑥引物中有或能加上合適的酶切位點， 被擴增的靶序列有適宜的酶切位點， 這對酶切分析或分子克隆很有好處。
⑦引物的特異性：引物應與核酸序列數據庫的其它序列無明顯同源性。
引物量：每條引物的濃度0.1～1umol或10～100pmol，以低引物量產生所需要的結果為好，引物濃度偏高會引起錯配和非特異性擴增，且可增加引物之間形成二聚體的機會。