實驗步驟

1. 分離制備單細胞懸液：

   1) 體外培養的細胞株：用胰酶消化，吹打成單細胞懸液；
   2) 體內臟器細胞：處死動物，取出臟器，于Hanks’液中制備成單個細胞懸液。

2. 膠板制備：
   1) 取20~50μl于56℃水浴中保溫的0.5%普通熔點瓊脂糖，鋪于磨沙載玻片上，形成底膠。
   2) 取100~150μl 0.5%普通熔點瓊脂糖加在底膠上，再于其上加蓋玻片，4℃冷凝10分鐘。
   3) 取下蓋片，取50~100μl于37℃水浴中保溫的1.0%的低熔點瓊脂糖與50~100μl細胞懸液(105 個細胞/ml)混勻，立即鋪片，加上蓋玻片，4℃冷凝10分鐘。
   4) 去掉蓋玻片，取70~100μl于37℃水浴中保溫的0.5%的低熔點瓊脂糖鋪片，加蓋玻片，4℃冷凝。

3. 細胞裂解與電泳：
   1) 將制備好的膠板去掉蓋玻片后，浸于4℃預冷的細胞裂解液中，4℃裂解1小時。
   2) 取出膠板，放入電泳槽中，浸泡在電泳液中解旋20分鐘。
   3) 4℃電泳20分鐘(25V，300mA)。

4. 中和與染色：
   1) 電泳結束，將膠板浸泡于中和液中，每次15分鐘，共中和兩次，注意更換中和液。
   2) 取出膠板，置于染色架上，滴加5μg/ml的PI，暗處染色20分鐘。
   3) 蒸餾水脫色15分鐘。

5. 鏡檢和分析：
   1) 在熒光顯微鏡下觀察，綠光激發吸收濾片590nm。必要時照相記錄。
   2) 記數觀察的細胞，記錄彗星細胞出現的頻率，用目鏡測微尺測頭長與全長，計算核DNA遷移距離。